Recientemente se describió un método para la recuperación de ácidos nucléicos separados en geles de poliacrilamida, el cual se basa en la detección sensible de ADN en el gel mediante zinc-imidazol seguido de la elución pasiva del mismo desde micropartículas de gel de 32 mm de tamaño promedio hacia el tampón de elución. En este trabajo se evalúa la racionalidad del uso preferencial de ADN micropurificado mediante este método, en comparación con el uso de ADN obtenido por un método convencional basado en la electroforesis en geles de agarosa seguida por la tinción con bromuro de etidio y su visualización con luz ultravioleta. Se encontró que la micropurificación de dos fragmentos de ADN, uno de 1,2 kpb que codifica el gen de resistencia a la kanamicina y el vector pUC19, mediante ambos métodos produjo el mismo - estadísticamente indistinguible (
P = 0,10) -, número de colonias cuando éstos se utilizaron para transformar células competentes de
Escherichia coli
XL-1 Blue. Sin embargo, el número de transformantes obtenidos en ausencia del inserto fue significativamente menor cuando el vector de ADN fue micropurificado del gel de acrilamida mediante el método zinc-imidazol (
P = 0,0002), lo que aumentó la probabilidad de encontrar colonias recombinantes en el experimento de clonación. Estos resultados estimularon el uso de la técnica basada en la tinción con zinc-imidazol para la micropurificación de ADN de alta calidad y para resolver las situaciones donde el ADN micropurificado convencionalmente de geles de agarosa (ej., genes de la proteína de membrana externa de clase 1 intacta o modificada en el lazo 5, y la proteína Opc de la cepa 866 de
Neisseria meningitidis
), falla en la generación de células recombinantes de
E. coli.