search
for
 About Bioline  All Journals  Testimonials  Membership  News





Insect Sci. Applic. Vol. 21, No. 1, pp. 1-22

Review Article

Inventaire Preliminaire des Arthropodes Ravageurs et Auxiliaires des Cultures Maraicheres sur l’Ile de la Réunion

J. F. Vayssières1, G. Delvare2, J. M. Maldès2 and H. P. Aberlenc2

1CIRAD-FLHOR/B.P. 701, 97387 Kourou. Cedex, Guyane
2CIRAD-AMIS/Avenue Agropolis, B.P. 5035, Montpellier, 34032

Accepted 20 September 2000

Code Number: ti01002

Résumé

A la Réunion, les ravageurs des cultures maraîchères, insectes et acariens, constituent un facteur limitant important pour le développement de ces productions. De nombreuses études ont été faites sur certains groupes de ravageurs dans les quarante dernières années mais aucun travail d’ensemble n’avait été entrepris concernant les arthropodes de l’île de la Réunion. Les principales familles de cultures maraîchères inventoriées sont les Solanaceae, les Cucurbitaceae, les Brassicaceae, les Fabaceae, les Liliaceae, les Asteraceae, les Apiaceae et les Rosaceae. Le résultat de ce travail d’enquête sur une année complète a permis d’identifier 123 espèces de ravageurs dont 114 d’insectes et 9 d’acariens. Il a permis également de mettre en évidence 51 espèces de parasitoïdes et 77 espèces de prédateurs, soit un total de 128 espèces d’auxiliaires dont 101 d’insectes, 14 d’acariens et 13 d’arachnides. Les données recueillies constituent le préalable pour la mise en œuvre de stratégies de surveillance et d’intervention dans un secteur en constant développement pour l’économie insulaire.

Mots Clés: cultures maraîchères, île de la Réunion, inventaire, arthropodes, ravageurs, auxiliaires, lutte intégrée, biodiversité

Abstract

In Reunion Island, insect and mite pests are significant limiting factors to the development of market crops. Several studies have been carried out on some families of pests during the last 40 years, but no comprehensive survey has been undertaken on the arthropods of vegetable crops on this island. During 1997/1998, we studied the arthropod complex on eight main families of crops, namely Solanaceae, Cucurbitaceae, Brassicaceae, Fabaceae, Liliaceae, Asteraceae, Apiaceae and Rosaceae. During a complete year of collection, we gathered 123 species of pests, including 114 species of insects and 9 of mites. We also identified a total of 128 species of beneficials, including 51 species of parasitoïds and 77 species of predators and consisting of 101 species of insects, 14 of mites and 13 of arachnids. Our data constitute the first step for the implementation of strategies for pest monitoring and integrated pest management in an important sector for the island’s insular economy.

Key Words: market crops, Reunion Island, inventory, arthropods, mites, beneficial organisms, IPM, biodiversity

Introduction

L’île de la Réunion, bien que d’apparition relativement récente, n’en possède pas moins une entomofaune relativement riche. Les ravageurs et les auxiliaires ont été plus particulièrement étudiés dans la seconde moitié du vingtième siècle même si les publications entomologiques les plus anciennes datent du 19ième siècle. En effet Cocquerel (1859) et Signoret (1860) ont décrit quelques espèces d’Aphididae de la Réunion nommée autrefois île Bourbon.

Les publications sont en général peu nombreuses. Certains groupes d’insectes ont été plus spécialement étudiés et cela concerne plus spécialement les Formicidae (Mamet, 1954), les Coccinellidae (Chazeau et al., 1974), les Agromyzidae (Vercambre, 1980), les Aleyrodidae (Russell and Etienne, 1985), les Tetranychidae (Gutierrez et Etienne, 1986), les Chrysopidae (Séméria and Quilici, 1986), les Aphididae (Remaudière et Etienne, 1988), le genre Cratopus chez les Curculionidae ( Ferragu et Richard, 1992; Quilici et Langlois, 1992) et les cicadelles (Bonfils et al., 1994). Des travaux d’ordre plus général ont été effectués sur les ravageurs des principales plantes cultivées par Bouriquet (1938), Plénet (1965), les ravageurs des cultures maraîchères par Vercambre (1989), Bordat (1990) et par De Bon et al. (1992).

Cette étude n’avait pas pour objectif de faire la synthèse des travaux antérieurs mais plutôt de collecter et d’identifier les arthropodes présents à travers des échantillonnnages réguliers tout au long de l’année sur les principales cultures maraîchères et dans des zones agro-écologiquement différentes. Les principaux ravageurs cités par les auteurs précédents ont été capturés à de nombreuses reprises et confirment ainsi l’intérêt qui a prévalu dans le cadre des études antérieures.

La finalité de cette étude est de constituer un référentiel de base devant permettre un inventaire, non exhaustif, et une priorisation des principaux ravageurs comme la valorisation de l’ensemble des agents de contrôle naturels qui constituent un outil décisionnel incontournable dans la mise en œuvre de méthodes de lutte intégrée.

Ce travail doit également répondre à une demande de la profession sur l’éventualité de l’introduction de nouvelles espèces d’auxiliaires sur l’île de la Réunion.

Matériel et Méthodes

Durant un peu plus d’une année (janvier 1997 à février 1998), un inventaire des arthropodes ravageurs capturés ou élevés à partir des principales espèces de cultures maraîchères, a été réalisé sur un total d’environ 70 localités distribuées sur l’ensemble des zones de maraîchage de l’île. De même, les principales espèces de ravageurs ont été observées, capturées et élevées dans certains cas, afin de clarifier quelques aspects de leur biologie et de leur comportement vis à vis de leurs hôtes.

Peu de prélèvements ont été effectués sur la côte est qui comporte très peu de cultures maraîchères du fait de conditions climatiques défavorables pour ces cultures. La majorité des sites de prélèvement était située à une altitude comprise entre 50 et 1200 mètres, bien que des prélèvements aient été effectués jusqu’à une altitude maximale de 1600 mètres.

Pour les principales espèces cultivées nous avons procédé à un échantillonnage spatio-temporel: chaque espèce cultivée était suivie sur plusieurs sites, si possible différents au point de vue agro-écologique, et avec des délais de récolte variables (tous les deux à trois mois) de façon à estimer les variations saisonnières des populations de ravageurs mais aussi d’auxiliaires. Les adventices proches des cultures et situées sur le périmètre des parcelles la plupart du temps étaient également observées; et si nécessaire des prélèvements
y étaient effectués.

Les échantillons de plantes, de ravageurs, et d’auxiliaires étaient rapportés, observés et mis en élevage au laboratoire. En général on procédait à un fauchage léger des plantes (50 coups de filet fauchoir) lorsque cela était possible. Sinon on se contentait d’observations sur une cinquantaine de plants.

Une fiche synthétique de terrain était utilisée pour chaque parcelle ou terrain de culture inventorié comportant les principales caractéristiques administratives, agronomiques et précisant les ravageurs collectés en fonction des stades phénologiques de la plante-hôte de même que les auxiliaires. Dans la mesure du possible on signalait les proies ou hôtes de ces derniers.

Huit familles botaniques échantillonnées englobent les espèces végétales correspondant aux cultures maraîchères: les Solanaceae, les Cucur-bitaceae, les Brassicaceae, les Fabaceae, les Liliaceae, les Asteraceae, les Apiaceae et les Rosaceae.

Les Solanaceae comprennent la tomate (Lycopersicon esculentum P. Mill), la pomme de terre (Solanum tuberosum L.), l’aubergine (S. melongena L.), le poivron et piment (Capsicum annuum L.).

Les Cucurbitaceae englobent la citrouille (Cucurbita pepo L.), la courgette (C. pepo L.), le concombre (Cucumis sativus L.), le melon (C. melo L.), la pastèque (Citrullus lanatus (Thunb.) Mats), le chouchou (Sechium edule (Jacq.) Sw), la margose (Momordica charantia L.), la pipangaille lisse (Luffa cylindrica (L.) Roem), la pipangaille à côtes ( Luffa acutangula (L.) Roxb.), la calebasse (Lagenaria siceraria (Sonder) Naudin).

Les Brassicaceae incluent le chou-pommé (Brassica oleracea L.), le chou-fleur (Brassica oleracea var. botrytis (L.) Miller), le chou chinois (Brassica campestris L. var. pekinensis (Lour) Olson), le chou broccoli (Brassica oleracea L. var. italica Pleuck), le navet (Brassica rapa L. var. rapa), le radis (Raphanus sativus L. var. sativus).

Les Fabaceae comprennent le haricot vert (Phaseolus vulgaris L.), le pois potager (Pisum sativum L.), l’antaque (Lablab purpureus (L.) Sweet), la fève (Vicia faba L.).

Les Liliaceae comprennent l’ail (Allium sativum L.), l’oignon ( Allium cepa L.), le poireau ( Allium porrum L.), l’échalotte (Allium cepa L. var. ascalonica).

Les Asteraceae incluent l’artichaut (Cynara scolymus L.), la laitue (Lactuca sativa L.), les chicorées (Cichorium spp.), le cardon (Cynara cardunculus L.).

Les Apiaceae englobent la carotte (Daucus carota L.), le céleri-branc (Apium graveolens L. var. dulce), le céleri-rave (Apium graveolens L. var. rapaceum (Mill), le fenouil (Foeniculum vulgare (Mill.), le persil (Petroselinum crispum (Miller) Nyman).

Les Rosaceae comprennent la fraise (Fragaria spp.).

Résultats et Discussion

Sur l’ensemble de ces 37 espèces de cultures maraîchères ayant été recensées, nous avons observé 123 espèces d’arthropodes ravageurs (Tableau 1) et 128 espèces d’arthropodes auxiliaires (Tableau 2).

Les ravageurs

Les différents goupes et le nombre d’espèces d’arthropodes ravageurs des cultures maraîchères inventoriés à l’île de la Réunion de janvier 1997 à février 1998 sont repris dans le tableau 1. L’annexe 1 donne les détails sur les ordres et familles de ces ravageurs et diverses familles botaniques de leurs plantes hôtes.

 
Annexe 1. Ordres et familles des espèces d’arthropodes ravageurs inventoriés sur différentes familles de cultures maraîchères à l’île de la Réunion (janvier 1997—février 1998)
  Arthropodes ravageurs
No. Ordre Famille Espèce Famille des plantes-hôtes
1 Acari Tarsonemidae Polyphagotarsonemus latus Banks Solanaceae, Cucurbitaceae
2   Tetranychidae Tetranychus urticae Koch Cucurbitaceae, Fabaceae, 
  Liliaceae      
3   Tetranychidae Tetranychus evansi Baker et Pritchard Solanaceae, Cucurbitaceae
4   Tetranychidae Tetranychus rooyenae Meyer Cucurbitaceae
5   Tetranychidae Tetranychus gardeniae Meyer Cucurbitaceae
6   Tetranychidae Tetranychus sp. Solanaceae
7   Tetranychidae Tetranychus sp. Fabaceae
8   Tetranychidae Oligonychus sp. Cucurbitaceae
9   Eriophyidae Aculops lycopersici (Massee) Solanaceae
10 Diptera Agromyzidae Liriomyza trifolii (Burgess) Solanaceae, Cucurbitaceae, Brassicaceae, Fabaceae, Liliaceae, Asteraceae, Apiaceae
11   Agromyzidae Liriomyza huidobrensis Blanchard Solanaceae, Cucurbitaceae, Brassicaceae, Fabaceae, Liliaceae, Asteraceae, Apiaceae
12   Agromyzidae Ophiomyia phaseoli Tryon Fabaceae
13   Agromyzidae Ophiomyia sp. Fabaceae
14   Agromyzidae Melanagromyza bonavistae Greathead Fabaceae
15   Muscidae Atherigona orientalis Schiner Solanaceae, Cucurbitaceae, Brassicaceae
16   Syrphidae Syritta flaviventris (Macquart) Apiaceae Arthropodes ravageurs
17   Tephritidae Bactrocera cucurbitae (Coquillett) Cucurbitaceae
18   Tephritidae Dacus ciliatus (Loew) Cucurbitaceae
19   Tephritidae Dacus demmerezi (Bezzi) Cucurbitaceae
20   Tephritidae Neoceratitis cyanescens (Bezzi) Solanaceae
21   Tephritidae Ceratitis capitata Wiedeman Solanaceae
22 Coleoptera Bruchidae Acanthoscelides obtectus (Say) Fabaceae
23   Cerambycidae Apomecyna atomaria Pascoe Cucurbitaceae
24   Chrysomelidae Aspidomorpha sp. Cucurbitaceae
25   Chrysomelidae Chaetocnema confinis Crotch Solanaceae
26   Chrysomelidae Epitrix laevifrons Weise Fabaceae
27   Curculionidae Cratopus humeralis Boheman Solanaceae, Rosaceae
28   Curculionidae Cratopus sp. Asteraceae
29   Curculionidae Asinonychus godmani (Crotch) Solanaceae, Apiaceae
30   Curculionidae Naupactus leucoloma Boheman Solanaceae, Fabaceae
31   Curculionidae Pantomorus godmani Crotch Solanaceae
32   Curculionidae Apion damryi Desbrochers Asteraceae
33   Elateridae Cardiotarsus brunneicollis (Erichson) Solanaceae, Apiaceae
34   Scarabaeidae Hoplochelus marginalis Fairmaire Solanaceae, Rosaceae
35   Scarabaeidae Hoplia sp. Fabaceae
36 Hemiptera Aleyrodidae Bemisia tabaci (Gennadius) Solanaceae, Cucurbitaceae,  Brassicaceae, Fabaceae
37   Aleyrodidae Trialeurodes vaporariorum (Westwood) Solanaceae, Cucurbitaceae, Brassicaceae, Fabaceae, Asteraceae
38   Aphididae Aphis gossypii Glover Solanaceae, Cucurbitaceae, 
        Fabaceae, Asteraceae
39   Aphididae Macrosiphum euphorbiae Thomas Solanaceae, Fabaceae, 
        Asteraceae, Rosaceae
40   Aphididae Aphis spiraecola Patch Solanaceae, Fabaceae
41   Aphididae Aphis fabae Scopoli Solanaceae
42   Aphididae Aphis craccivora Koch Fabaceae
43   Aphididae Myzus persicae (Sulzer) Solanaceae, Brassicaceae, Fabaceae
44   Aphididae Acyrtosiphon pisum Harris Fabaceae
45   Aphididae Tetraneura nigriabdominalis (Sasaki) Solanaceae
46   Aphididae Toxoptera citricida (Kirkaldy) Solanaceae, Fabaceae
47   Aphididae Uroleucon compositae (Theobald) Solanaceae
48   Aphididae Cinara sp. Fabaceae
49   Aphididae Brevicoryne brassicae (Linné) Brassicaceae
50   Aphididae Lipaphis erysimi (Kaltenbach) Brassicaceae
51   Aphididae Aulacorthum solani (Kaltenbach) Fabaceae
52   Aphididae Aploneura lentisci Passerini Fabaceae
53   Aphididae Nasonovia ribisnigri (Mosley) Fabaceae, Asteraceae
54   Aphididae Coloradoa rufomaculata (Wilson) Fabaceae
55   Aphididae Neotoxoptera oliveri (Essig) Liliaceae
56   Aphididae Neotoxoptera formosana (Takahashi) Liliaceae

Les 123 arthropodes ravageurs n’ont bien évidemment pas tous la même importance. Pour chaque famille nous nous sommes efforcés de mettre en valeur les espèces de ravageurs les plus préjudiciables aux cultures.

Ravageurs des Solanaceae

Les ravageurs les plus préjudiciables des Solanaceae sont: Bemisia tabaci (Gennadius) (Hemiptera: Aleyrodidae), Frankliniella occidentalis Pergande (Thysanoptera: Thripidae), Neoceratitis cyanescens (Bezzi) (Diptera: Tephritidae).

Bemisia tabaci (Gennadius)

C’est un des principaux ravageurs des cultures maraîchères à la Réunion et tout spécialement la tomate. Bien que les premières collectes et identifications de cette espèce aient été faites par Bouriquet (1938) à St Denis, confirmées en 1953 par Luziau (Russell and Etienne, 1985), ce n’est qu’en 1997 que B. tabaci a été observé sur tomate (Peterschmitt et al., 1999). Les dégâts directs se caractérisent par des prélèvements de sève et des sécrétions de miellat réduisant ainsi la photosynthèse et donc le développement du plant et sa production. C’est par ses dégâts indirects en tant que vecteur de virus (Tomato Yellow Leaf Curl Virus) que cet hémiptère a une action très préjudiciable: les dégâts enregistrés en 1998 et 1999 sur les cultures de tomate ont été particulièrement graves pour les producteurs réunionnais (pers. observ.).

A la Réunion, les ponctions de phloème se font aussi bien sur Solanaceae que sur Brassicaceae et sur Cucurbitaceae. Pour cette dernière famille le symptôme classique est l’apparition de ´l’argentureª, causée par B. tabaci biotype B, après les premières piqûres et ce, essentiellement pour le genre Cucurbita. Les hôtes sauvages de B. tabaci sont nombreux à la Réunion (Euphorbia heterophylla L., Lantana camara L., Solanum nigrum L.) et servent de plantes-réservoirs à cette espèce.

Frankliniella occidentalis Pergande

Ce Thripidae d’origine américaine (Californie, Mexique) a été introduit en Europe en 1985 et a été trouvé à la Réunion en 1987 par S. Quilici (Bournier, 2000). Ce ravageur très polyphage, sur cultures maraîchères et florales, est difficile à maîtriser en cultures de plein champ comme en cultures sous abri. Il a été récolté en nombre sur Solanaceae, Fabaceae, Asteraceae, Liliaceae et Rosaceae. Nous l’avons également capturé sur de nombreux hôtes (sauvages ou non) à la Réunion tels que Cucumis anguria L., Sonchus asper L., Tropaeolum sp., Callistephus sp., Convolvulus sp., Antirrhinum sp., Hibiscus sp.

Les dégâts directs sont très variables suivant les cultures et ils apparaissent à la suite des piqûres, provoquant des déformations ou des dépigmentations au niveau des organes attaqués et les fleurs infestées deviennent stériles. Ses dégâts indirects, en tant que vecteur de virus (Tomato Spotted Wilt Virus) sont très préjudiciables à de nombreuses cultures. (Boissot et al., 1998).

Neoceratitis cyanescens (Bezzi)

Ce Tephritidae, probablement d’origine malgache, a été introduit à la Réunion avant 1950 (Etienne, 1972), les premiers dégâts ayant été mentionnés en 1951. L’ensemble des fruits de Solanaceae cultivées sont piqués par cette espèce. Les jeunes tomates vertes sont tout particulièrement attractives et sont piquées dès que leur taille atteint 2 cm (Brévault, 1999); sans protection phytosanitaire il est illusoire d’espérer une récolte.

A la Réunion trois espèces d’hôtes sauvages sont particulièrement appréciées par cette mouche, Solanum auriculatum Aiton, S. nigrum L. et dans une moindre mesure S. torvum Sw.
 

Ravageurs des Cucurbitaceae

Pour la famille des Cucurbitaceae les ravageurs les plus importants sont: Bactrocera cucurbitae (Coq.), Dacus ciliatus Loew, Dacus demmerezi (Bezzi), tous les trois Diptera Tephritidae et Aphis gossypii Glover (Hemiptera: Aphididae).

Bactrocera cucurbitae (Coq.); Dacus ciliatus Loew et Dacus demmerezi (Bezzi)

Ces 3 espèces de ´mouches des légumesª sont des ravageurs frugivores primaires de toutes les espèces de cette famille botanique que nous avons récoltées et elles sont considérées comme le problème entomologique majeur des Cucurbitaceae à la Réunion (Vayssières, 1999).

D. demmerezi (ou ´mouche des Cucurbitaceae de l’Océan Indienª) est la seule espèce endémique de la sous-région (Madagascar et îles Mascareignes), tandis que D. ciliatus (ou ´mouche éthiopienne des Cucurbitaceaeª) d’origine panafricaine et B. cucurbitae (ou ´mouche du melonª) d’origine indienne sont d’introduction relativement récente sur l’île. D. ciliatus a été signalé à la Réunion par Pointel (1964) et B. cucurbitae par Etienne (1972). Les deux dernières espèces sont des ravageurs répandus tout autour de l’Océan Indien.
 
 

A la Réunion ces 3 espèces oligophages sont inféodées à la famille des Cucurbitaceae, B. cucurbitae et D. ciliatus s’attaquant à 16 espèces végétales et D. demmerezi à 13 de ces 16 espèces. Quatre d’entre elles Coccinia grandis (L.) Voigt, Cucumis anguria L., Lagenaria sphaerica (Sonder) Naudin, Momordica charantia L, sont des Cucurbitaceae sauvages qui constituent des plantes-réservoirs permettant la reproduction de la mouche du melon tout au long de l’année, essentiellement le long de toute la côte sous le vent.

Les fruits sont piqués par les femelles des 3 espèces de diptères dans la dizaine de jours suivant la nouaison et parfois même avant que l’ovaire ne soit fécondé, comme c’est souvent le cas pour la citrouille et la courgette (C. pepo). Ces mouches peuvent déposer leurs pontes dans les parties végétatives de la plante (tiges) comme dans les organes floraux (fleurs femelles et mâles). Ceci peut expliquer également une certaine méconnaissance de la part des exploitants agricoles des dégâts occasionnés par les 3 espèces de Dacini à leurs cultures.

Aphis gossypii Glover et Myzus persicae (Sulzer)

Aphis gossypii transmet des virus selon le mode non persistant (Blancard et al., 1991). La grande efficacité de ce mode de transmission permet aux maladies virales de se propager avec de faibles populations du puceron. Myzus persicae est aussi un vecteur de maladies virales.

Les Cucurbitaceae sont infectées par deux virus, le Zucchini Yellow Mosaic Virus (ZYMV) et le Cucumber Mosaic Virus (CMV). Ce dernier virus attaque de nombreuses espèces botaniques tant cultivées que spontanées (Rumex abyssinicus L., Euphorbia hirta L., Solanum nigrum L., Cajanus cajan Mills, Tropaeolum sp., Callistephus sp.), infestées par ces deux Aphididae à la Réunion. Ces plantes peuvent constituer des sources virales quasi permanentes à partir desquelles ces vecteurs peuvent relancer des épidémies sur les cultures.
 
 

En Annexe 2 figurent les adventices sur lesquelles ont été récoltées des espèces d’Aphididae dont certaines espèces sont des ravageurs des cultures maraîchères.

Annexe 2. Aphididae sur adventices à l’île de la Réunion de janvier 1997 à février 1998
 
Adventices
Aphidides
Famille Espèce Nom vernaculaire Espèce
Amaranthaceae Amaranthus sp. pariétaire Macrosiphum euphorbiae (Th.)
  " " Aphis craccivora Koch
  " " Aphis fabae Scop.
Brassicaceae Raphanus raphanistrum L ravenelle Lipaphis erysini (Kaltenbach
Compositae Sonchus asper (L.) Hill Lastron ou laiteronª Uroleucon sonchi (L.)
  " " Hyperomyzus lactucae L.
  " " Macrosiphum euphorbiae (Th.)
  Bidens pilosa L. piquant noir Aphis spiraecola Patch
  Callistephus sp. marguerite Uromelan compositae (Theob.)
Euphorbiaceae Euphorbia hirta L herbe de lait Aphis gossypii Glover
Fabaceae Vigna unguiculata (L.) voeme Aphis craccivora Koch
  Cajanus cajan Mills ambrevade Brachycaudus helichrysi (Kalt.)
  " " Acyrtosiphon pisum (Harris)
  " " Aphis craccivora Koch
  " " Myzus persicae (Sulzer)
  " " Macrosiphum euphorbiae (Th.)
Polygonaceae Rumex abyssinicus L. grande oseille Aphis gossypii Glover
  " " Myzus persicae (Sulzer)
  " " Macrosiphum euphorbiae (Th.)
Solanaceae Solanum nigrum L morelle Aphis fabae Scop.
  " " Aulacorthum solani (Kaltenbach)
  " " Macrosiphum euphorbiae (Th.)
Tropeolaceae Tropeola sp. capucine Myzus persicae (Sulzer)
  " " Brevicoryne brassicae (L.)

 

Ravageurs des Brassicaceae

Les ravageurs les plus préjudiciables des Brassicaceae sont Plutella xylostella (Linné) (Lepidoptera: Yponomeutidae) et Crocidolomia pavonana (Fab.) (Lepidoptera: Crambidae).

Plutella xylostella (Linné)

Cette espèce ou ´teigne des crucifèresª est un redoutable ravageur des choux présents à la Réunion. Ses chenilles phyllophages dévorent le limbe en créant des fenêtres dans les feuilles et en cas de fortes attaques seules les nervures subsistent. Outre les espèces cultivées de Brassicaceae, les hôtes sauvages de cette famille tels que Raphanus raphanistrum (L.) hébergent également ce lépidoptère. Ce ravageur, d’importance économique primordiale, a développé des résistances vis à vis de nombreux insecticides (Denholm and Rowland, 1992) ainsi qu’à Bacillus thuringiensis Berliner (Tabashnik, 1994). Le contrôle de ce lépidoptère dépendra de la mise en œuvre de nouvelles stratégies de lutte intégrée; la lutte biologique avec les parasitoïdes et les prédateurs en étant une importante composante.

Crocidolomia pavonana (Fab.)

Ce Crambidae peut occasionner des dégâts très importants dans le cœur de choux bien développés. Les chenilles de C. pavonana vivent en groupe à l’intérieur des choux et on peut souvent les voir alignées parallèlement les unes aux autres en train de dévorer les feuilles les plus tendres.
 
 

Ravageurs des Fabaceae

Pour la famille des Fabaceae les ravageurs les plus préjudiciables sont : Frankliniella occidentalis (Perg.) (Thysanoptera: Thripidae), Bemisia tabaci (Gennadius) (Hemiptera:. Aleyrodidae), Maruca vitrata (Fabricius) (Lepidoptera: Crambidae), Liriomyza trifolii (Burgess) (Diptera: Agromyzidae), (Liriomyza huidobrensis (Blanchard) (Diptera: Agromyzidae) et Ophiomyia phaseoli Tryon (Diptera: Agromyzidae).

Frankliniella occidentalis et Bemisia tabaci

Ces ravageurs mentionnés ci-dessus sur les Solanaceae causent aussi les dégâts semblables sur les Fabaceae.

Maruca vitrata (Fabricius)

La pyrale des gousses a une action destructrice importante au niveau des grains contenus dans les gousses des espèces de cette famille.

Liriomyza trifolii (Burgess) et L. huidobrensis (Blanchard)

Ces mouches mineuses sont des ravageurs de grande importance économique du fait de leur fort potentiel biotique et de leur polyphagie sur Solanaceae, Cucurbitaceae, Brassicaceae, Fabaceae, Alliaceae, Asteraceae, Liliaceae etc. Ces mineuses vivent aux dépens de la plupart des espèces légumières cultivées mais aussi sur cultures florales ou sur adventices (Amaranthus sp., Chenopodium sp., Sonchus asper L., Solanum nigrum L., Tropaeolum sp.). Ces adventices, consommées comme brèdes et donc non traitées par les agriculteurs, constituent autant de foyers de réinfestation.

Liriomyza trifolii est une mineuse répandue sur le littoral et les zones de faibles altitudes tandis que L. huidobrensis est une espèce que l’on rencontre surtout en altitude mais on peut néanmoins observer cette dernière espèce à faible altitude en saison fraîche. Les dégâts de L. huidobrensis semblent plus dommageables pour la plante que ceux occasionnés par L. trifolii (Weintraub and Horowitz, 1995); les larves de la première espèce attaquent les couches du mésophylle contenant les chloroplastes tandis que celles de la deuxième espèce mine le mésophylle palissadique (Parella, 1987).

Ophiomyia phaseoli Tryon

Cette mineuse fait des dégâts importants au niveau inférieur de la tige, produisant une prolifération cellulaire, d’où son nom de ´mouche du gros genouª. Elle est fréquente sur Phaseolus vulgaris L. et Vigna sp.
 
 

Ravageurs des Liliaceae

Pour la famille des Liliaceae les ravageurs principaux sont: Thrips tabaci Lindemann (Thysanoptera: Thripidae) et Liriomyza trifolii (Burgess) (Diptera: Agromyzidae).

Thrips tabaci Lindemann

C’est le thrips le plus préjudiciable sur Liliaceae mais il infeste aussi plusieurs autres familles végétales et cause d’importants dégâts en plein champ comme en cultures sous abri. L’adulte vit à l’intérieur des gaines de Liliaceae, sous les jeunes feuilles ou dans les cœurs de Brassicaceae de même que dans les jeunes pousses d’Anthemis sp. et de Dianthus sp.

Liriomyza trifolii (Burgess)

Ce ravageur cause les mêmes dégâts que dans le cas des Fabaceae.
 
 

Ravageurs des Asteraceae

Le deux ravageurs importants des Asteraceae cultivées sont Frankliniella occidentalis (Perg.) (Thysanoptera: Thripidae) et Tebenna bjerkandrella Thunberg (Lepidoptera: Choreutidae).

Frankliniella occidentalis (Perg.)

Ce ravageur inflige des dégâts identiques à ceux occasionnés aux Fabaceae et Solanaceae.

Tebenna bjerkandrella Thunberg

Cette espèce de lépidoptère est un redoutable défoliateur de Cynara scolymus L. et de C. cardunculus L. Les chenilles tissent des fils de soie qui leur permettent de se protéger à l’intérieur de la feuille le long de la nervure.
 
 

Ravageurs des Apiaceae

Les ravageurs importants des Apiaceae sont: Trichoplusia aurichalcea (Fab.) (Lepidoptera: Noctuidae) et Syritta flaviventris (Macquart) (Diptera: Syrphidae).

Trichoplusia aurichalcea (Fab.)

C’est un défoliateur des Apiaceae, principalement Daucus carota L., que l’on trouve assez communément sur les feuilles dans la zone de Piton Hyacinthe.

Syritta flaviventris (Macquart)

Cette espèce de diptère serait un ravageur secondaire dont les larves s’installeraient dans la racine de la carotte après des attaques par le Curculionidae (Asynonychus godmani Crotch) ou le Scarabaeidae (Hoplochelus marginalis Fairmaire) ou encore suite aux simples lésions dues à des pathogènes.
 
 

Ravageurs des Rosaceae

Pour la famille des Rosaceae, et plus spécialement le fraisier, le ravageur le plus important est Frankliniella occidentalis (Pergande) (Thysanoptera: Thripidae).

Signalons que C. Chane Too a capturé sur fraisier un Cercopidae Philaenus spumarius (Fallen) d’importance économique et importé de la zone paléarctique (Quilici et al., 1998).

Les auxiliaires

Le nombre d’espèces d’auxiliaires recensés (parasitoïdes et prédateurs), les hyperparasites sont repris dans le tableau 2. L’annexe 3 donne les relations trophiques entre auxiliaires, ravageurs et plantes hôtes.

 

Annexe 3. Relations tritrophiques entre auxiliaires / ravageurs / plantes-hôtes à l’île de la
Réunion (janvier 1997—février 1998)

No. Ordre (Statut) Famille Genre/Espèce  Ravageurs cibles Cultures maraîchères
1 Hymenoptera Braconidae Dacnusa sibirica Telenga Liriomyza spp. Solanaceae; Cucurbitaceae; Fabaceae
  (Parasitoïdes)         
2     Dacnusa sp. Liriomyza spp. Asteraceae; Cucurbitaceae
3     Opius dissitus Muesebeck Liriomyza spp. Solanaceae; Cucurbitaceae
4     Opius sp. Liriomyza spp. Fabaceae
5     Apanteles aff. Acutissimus Granger Diaphana indica  Cucurbitaceae
6     Apanteles sp. Phthorimea operculella Solanaceae
7     Apanteles sp. Tebenna bjerkandrella Asteraceae
8     Cotesia plutellae (Kurdjumov)
 
Plutella xylostella Brassicaceae
9     Cotesia sp. Phthorimea operculella Solanaceae
10     Psyttalia fletcheri (Silvestri) Bactrocera cucurbitae Dacus ciliatus;  Cucurbitaceae
11     Praon sp. Aphididae Asteraceae
12     Meteorus sp. Vanessa cardui Asteraceae
13     Aphidius colemani Viereck Aphididae Solanaceae; Cucurbitaceae; Brassicaceae; Fabaceae
14     Aphidius sp. Aphididae Solanaceae; Cucurbitaceae; Brassicaceae; Fabaceae; Liliaceae; Asteraceae; Apiaceae; Rosaceae
15     Aphelinus gossypii Timberlake Aphididae Solanaceae; Cucurbitaceae; 
16     Aphelinus varipes (Förster) Aphididae Solanaceae
17     Aphelinus asychis Walker Aphididae Cucurbitaceae
18   Eulophidae Chrysocharis bedius (Walker) Liriomyza spp. Solanaceae; Asteraceae; Cucurbitaceae
19     Chrysocharis sp. Liriomyza spp. Fabaceae; Liliaceae; Brassicaceae
20     Hemiptarsenus varicornis (Girault) Liriomyza spp. Solanaceae; Brassicaceae; Cucurbitaceae;
21     Neochrysocharis formosa (Westwood) Liriomyza spp. Solanaceae
22     Neochrysocharis sp.  Liriomyza spp. Fabaceae
23     Euplectrus sp. Heliothis armigera Solanaceae
24     Tetrastichus giffardianus Silvestri Ceratitis capitata Solanaceae 
25     Oomyzus sokolowskii (Kurdjumov) Plutella xylostella Brassicaceae
26     Chrysocharis sp. Liriomyza spp. Brassicaceae
27 Hymenoptera
(Parasitoïdes)
Aphelinidae Encarsia formosa Gahan Bemisia tabaci (Gen.); Trialeurodes vaporariorum (West.) Solanaceae; Cucurbitaceae; Fabaceae; Asteraceae
28     Encarsia nigricephala Dozier Bemisia tabaci (Gen.); Trialeurodes vaporariorum (West.) Solanaceae; Fabaceae; Cucurbitaceae
29     Encarsia luteola Howard Bemisia tabaci (Gen.) Solanaceae; Cucurbitaceae
30     Encarsia tabacivora Viggiani Bemisia tabaci (Gen.) Cucurbitaceae; Fabaceae
31     Encarsia transvena (Timberlake) Bemisia tabaci (Gen.) Fabaceae
32     Encarsia aff. hispida De Santis Trialeurodes vaporariorum (West.) Solanaceae
33     Encarsia acaudaleyrodis Hayat Trialeurodes vaporariorum (West.) Cucurbitaceae
34     Eretmocerus mundus Mercet Bemisia tabaci (Gen.); Trialeurodes vaporariorum (West.) Solanaceae; Fabaceae; Cucurbitaceae
35     Eretmocerus hayati Zolnerovitch & Rose Bemisia tabaci (Gen.); Solanaceae; Cucurbitaceae
36     Trichogramma chilonis Ischii Plutella xylostella Brassicaceae
37   Ichneumonidae Diadegma sp. Phthorimea operculella Solanaceae
38     Diplazon laetatorius (Fab.)+ Syrphidae Cucurbitaceae
39     Diadegma mollipla (Holmgren) Plutella xylostella Brassicaceae 
40     Pristomerus sp. Tebenna  & Plutella xylostellabjerkandrella Asteraceae 
41     Temelucha sp. Vanessa cardui Asteraceae
42     Diadegma sp. Tebenna bjerkandrella Asteraceae
43   Pteromalidae Pachyneuron sp.+ Aphididae Solanaceae
44     Spalangia gemina Boucek Bactrocera cucurbitae Cucurbitaceae
45     Spalangia seyrigi Risbec Dacus ciliatus Cucurbitaceae 
46     Spalangia endius Walker Dacus ciliatus Cucurbitaceae
47     Ploskana tenuis Boucek Bactrocera cucurbitae Cucurbitaceae
48     Halticoptera sp. Liriomyza spp. Brassicaceae; Liliaceae
49     Pteromalus sp. Maruca vitrata Fabaceae
50     Trichomalopsis sp.+ ? Asteraceae
51   Encyrtidae Copidosoma koelheri Blanchard Phthorimea operculella Solanaceae
52     Syrphophagus africanus+ (Gahan) ? Solanaceae
53   Chalcididae Dirhinus giffardii Silvestri Dacus ciliatus Cucurbitaceae
54     Dirhinus sp.  Dacus ciliatus Cucurbitaceae
55 Hymenoptera (Parasitoïdes) Diapriidae Trichopria sp. Dacus ciliatus Cucurbitaceae
56   Eupelmidae Eupelmus sp. Maruca vitrata Fabaceae
57 Diptera (Parasitoïde) Tachinidae Drino sp. Diaphana indica Cucurbitaceae
58 Hemiptera Anthocoridae Orius aff. Aleyrodidae; Solanaceae; Cucurbitaceae;
  (Prédateurs)    thripoborus (Hesse) Aphididae; Thripidae Fabaceae; Asteraceae; Liliaceae
59     Cardiastethus aff. capensis Carayon Aleyrodidae; Aphididae; Thripidae Solanaceae; Fabaceae;
60     Cardiastethus fulvescens (Walker) Aleyrodidae; Aphididae; Thripidae Solanaceae 
61     Xylocoris afer (Reuter) ? Cucurbitaceae
62     Buchananiella sodalis (Buchanan & White) Thripidae Cucurbitaceae
63     Amphiareus constrictus Stäl ? Cucurbitaceae
64   Miridae Deraeocoris indianus Carvalho Aleyrodidae; Aphididae Solanaceae; Cucurbitaceae; Fabaceae; Asteraceae
65     Deraeocoris ostentans (Stäl) Aleyrodidae; Aphididae Solanaceae; Cucurbitaceae; Fabaceae; Asteraceae
66     Nesidiocoris tenuis Reuter Aleyrodidae; Aphididae Solanaceae; Cucurbitaceae; Fabaceae; Asteraceae
67     Nesidiocoris sp. ? Cucurbitaceae
68     Campylomma leucochila (Reuter) Aleyrodidae Solanaceae; Cucurbitaceae; Fabaceae; Asteraceae
69     Nabidomiris clypealis Poppius ? Solanaceae
70     Trigonotylus tenuis Reuter Aleyrodidae Solanaceae
71     Lygus palus Taylor ? Asteraceae
72     Eurystylus bellevoyei (Reuter) Aleyrodidae Cucurbitaceae
73     Creontiades pallidus (Rambur) Aleyrodidae Cucurbitaceae
74     Proboscidocoris punctaticollis Reuter Aphididae Fabaceae
75     Moissonia nigropunctata (Poppius) ? Fabaceae
76   Nabidae Arbela elegantula (Stäl) Divers Solanaceae
77     Nabis capsiformis Germar Divers Solanaceae; Cucurbitaceae; Liliaceae
78     Nabis sp. Pentatomidae Solananceae
79 Hemiptera(Prédateurs) Reduviidae Stenolemus griveaudi (Villiers) Divers Solanaceae
80     Empicoris rubromaculatus (Blackburn) Divers Cucurbitaceae
81 Diptera(Prédateurs)
 
Syrphidae Paragus borbonicus Macquart Aphididae Solanaceae; Cucurbitaceae; Fabaceae
82     Ischiodon aegyptius Wiedemann Aphididae Cucurbitaceae
83     Allograpta nasuta (Macquart) Aphididae Liliaceae; Asteraceae
84     Melanostoma annulipes (Macquart) Plutella xylostella Brassicaceae
85     Episyrphus sp. nov. Plutella xylostella Brassicaceae
86     Epistrophe sp. nov. Aphididae Liliaceae
87   Cecidomyiidae Giardomyia sp. Aphididae (?) Solanaceae
88     Feltiella acarisuga (Vallot) Tetranychidae Cucurbitaceae
89     Feltiella sp. Tetranychidae Cucurbitaceae
90   Muscidae Atherigona orientalis Schiner larves de Tephritidae Solanaceae; Cucurbitaceae
91 Neuroptera(Prédateurs) Hemerobiidae Micromus timidus Hagen Aleyrodidae; Aphididae Solanaceae; Cucurbitaceae
92     Micromus africanus Weele Aleyrodidae; Aphididae Asteraceae
93     Micromus plagatus Navas Aleyrodidae; Aphididae Asteraceae
94   Chrysopidae Mallada desjardinsi Navas Aphididae Solanaceae
95     Borniochrysa squamosa Navas Aphididae Cucurbitaceae
96     Ceratochrysa antica (Walker) Aphididae Cucurbitaceae
97 Coleoptera(Prédateurs) Coccinellidae Exochomus laeviusculus Weise Aphididae  Solanaceae; Liliaceae Asteraceae
98     Scymnus constrictus Mulsant Aphididae Cucurbitaceae
99     Cheilomenes sulphurea (Olivier) Aphididae Cucurbitaceae
100     Platynaspis capicola Crotch Aphididae Fabaceae ou Cucurbitaceae ?
101 Hymenoptera
(Prédateurs)
Formicidae Solenopsis geminata(Fabricius) chenilles et larves de diptères divers Solanaceae; Cucurbitaceae
102     Crematogaster sp. insectes divers Cucurbitaceae
103 Thysanoptera
(Prédateurs)
Aeolothripidae Franklinothrips vespiformis Crawford Thripidae Solanaceae; Cucurbitaceae
104     Franklinothrips sp. Thripidae Rosaceae
105   Thripidae Scolothrips rhagebianus Priesner Thripidae Cucurbitaceae
106 Thysanoptera (Prédateurs)   Scolothrips hartwigi Priesner Thripidae Cucurbitaceae
107   Phlaeothripidae Haplothrips gowdeyi Franklin Thripidae Solanaceae; Apiaceae
108 Acari (Prédateurs) Phytoseiidae Phytoseiulus persimilis Ashmead Tetranychidae Solanaceae; Cucurbitaceae
109   Phytoseiidae Phytoseiulus ferox Pritch et Baker Tetranychidae Cucurbitaceae
110     Amblyseius barkeri (Hugues) Thripidae; Tetranychidae; Aleyrodidae Cucurbitaceae
111     Amblyseius herbicolus (Chant) Tetranychidae Cucurbitaceae
112     Amblyseius sp. Tetranychidae Solanaceae; Cucurbitaceae
113     Kampimodromus spinosus (Meyer & Rodrigues) Tetranychidae Cucurbitaceae
114   Anystidae Anystis baccarum (Linné) Thripidae; Tetranychidae; Aleyrodidae Solanaceae; Cucurbitaceae
115   Tydeidae Tydeus sp. Hemiptera Solanaceae
116   Hemisar- coptidae Hemisarcoptes sp. ? Solanaceae
117   Parasitidae Parasitus sp. larves de Diptera Cucurbitaceae; Apiaceae
118     Parasitus sp. Aphididae Liliaceae; Asteraceae
119   Stigmaeidae Agistemus sp. Tetranychidae Cucurbitaceae; Apiaceae
120   Bdellidae Bdellodes sp. Tetranychidae Fabaceae
121   Macrochelidae Glyptolaspis sp. ? Apiaceae
122 Aranei (Prédateurs) Salticidae Plexippus paykulli(Audouin) Diptera et divers Cucurbitaceae
123     Hasarius adansoni (Audouin) Diptera et divers Cucurbitaceae
124     Cynapes lineatus (Vinson) Diptera et divers Cucurbitaceae
125   Thomisidae Phrynarachne rugosa (Walckenaer) Diptera et divers Cucurbitaceae
126     Misumena alluaudi Simon Diptera et divers Cucurbitaceae
127   Sparassidae Sparassus lamarcki (Latreille) Diptera et divers Cucurbitaceae
128   Araneidae Neocosna moreli (Vinson) Diptera et divers Cucurbitaceae
129     Neocosna sp. Diptera et divers Cucurbitaceae
130     Araneus sp. Diptera et divers Cucurbitaceae
131   Therididae Theridium diurnum (Vinson) Diptera et divers Cucurbitaceae
132     Theridium sp. Diptera et divers Cucurbitaceae
133     Coleosoma blandum O. P. Cambridge Diptera et divers Cucurbitaceae
134   Pholcidae Artema mauritiana Walckenaer Diptera et divers Cucurbitaceae
+ Hyperparasites.

 

Les 128 auxiliaires n’ont pas tous la même importance et nous ne mentionnerons ici que les plus grands groupes et ceux d’intérêt biologique. Nous nous sommes intéressés particulièrement aux parasitoïdes, généralement plus spécifiques d’un hôte ou d’un groupe d’hôtes.

Les principaux parasitoïdes

Les espèces de parasitoïdes recensés sont exclusivement constituées d’hyménoptères à l’exception d’une seule espèce de diptère tachinide.

Hymenoptera parasitoïdes de larves et nymphes d’Aleyrodidae

• Les Aphelinidae

Les Aphelinidae des genres Encarsia et Eretmocerus sont des parasitoïdes d’Aleyrodidae. Nous avons récolté et élevé 7 espèces d’Encarsia et 2 espèces d’Eretmocerus vivant aux dépens de B. tabaci et de Trialeurodes vaporariorum (West.). Ces 9 Aphelinidae peuvent se développer aux dépens des 2 espèces d’Aleyrodidae indépendamment de préférences parfois très ciblées. Ainsi B. tabaci est l’hôte préférentiel d’Eretmocerus mundus Mercet, d’ Encarsia luteola Howard, d’ E. nigricephala Dozier, d’ E. aff. hispida De Santis tandis que T. vaporariorum est l’hôte préférentiel d’Eretmocerus hayati Zolner Rose, d’ Encarsia formosa Gahan, d’ E. acaudaleyrodis Hayat, d’ E. tabacivora Viggiani, d’ E. transvena (Timberlake). Signalons qu’E. luteola est très proche d’E. formosa, l’outil de différenciation idéal étant la biologie moléculaire. De même E. hayati est très proche d’E. mundus.
 
 

Hymenoptera parasitoïdes d’Aphididae • Les Braconidae

Les Braconidae des genres Aphidius, Aphelinus et Praon sont des parasitoïdes de pucerons. (Quilici et al., 1998).

Aphidius colemani Vierek s’attaque à A. gossypii sur Cucurbitaceae et Solanaceae, à Myzus persicae (Sulzer) sur Solanaceae et Brassicaceae, à Uroleucon compositae (Theob.) sur Solanaceae et Cucurbitaceae, à Lipaphys erysimi (Kalt.) et à Aphis craccivora Koch sur Solanaceae.

Aphelinus varipes (Förster) est surtout un parasitoïde d’A. gossypii sur Cucurbitaceae et Solanaceae.

Aphelinus gossypii Linné est surtout un parasitoïde d’ A. gossypii sur Cucurbitaceae et Solanaceae.

Aphelinus asychis Walker est aussi un parasitoïde d’ A. gossypii sur Cucurbitaceae.

Praon sp. est un parasitoïde d’Uroleucon sonchi (L.), Hyperomyzus lactucae (L.), Nasonovia ribisnigri (Mosley) et Macrosiphum euphorbiae (Thomas) sur Asteraceae et Solanaceae.
 
 

Hymenoptera parasitoïdes de larves et pupes d’Agromyzidae • Les Braconidae

Les Braconidae des genres Dacnusa et Opius sont des parasitoïdes d’Agromyzidae.

Dacnusa sibirica Telenga et Dacnusa sp. sont des parasitoïdes de L. huidobrensis sur diverses cultures maraîchères.

Opius dissitus Muesebeck est un parasitoïde de L. trifolii sur diverses cultures maraîchères.

• Les Eulophidae

Les Eulophidae des genres Chrysocharis, Neochrysocharis et Hemiptarsenusont des parasitoïdes d’Agromyzidae.

Chrysocharis bedius (Walker) est un parasitoïde de L. huidobrensis ur diverses cultures maraîchères.

Chrysocharis bedius (Walker), Neochrysocharis formosa (Westwood) et Hemiptarsenus varicornis (Gir.) sont des parasitoïdes de L. trifolii sur diverses cultures maraîchères.

• Les Pteromalidae

Les Pteromalidae du genre Halticoptera sont des parasitoïdes d’Agromyzidae.

Halticoptera sp. est un parasitoïde de L. trifolii sur diverses cultures maraîchères.
 
 

Hymenoptera parasitoïdes de chenilles de Lepidoptera • Les Ichneumonidae

Les Ichneumonidae des genres Diadegma, Temelucha, Pristomerus sont des parasitoïdes de chenilles de Crambidae, Yponomeutidae, Noctuidae, Gelechiidae et de Choreutidae.

Diadegma mollipla est un parasitoïde des chenilles de P. xylostella sur Brassicaceae qui n'était pas encore signalé de la Réunion. Diadegma spp. sont des parasitoïdes des chenilles de T. bjerkandrella sur Asteraceae et de Spodoptera littoralis sur Solanaceae.

Temelucha sp. est un parasitoïde des chenilles de T. bjerkandrella sur Asteraceae.

Pristomerus sp. est un parasitoïde des chenilles de T. bjerkandrella sur Asteraceae.

• Les Braconidae

Les Braconidae des genres Cotesia, Apanteles et Meteorus sont des parasitoïdes de lépidoptères.

Cotesia plutellae (L.) est un parasitoïde des chenilles de P. xylostella sur Brassicaceae qui n’était pas encore signalé de la Réunion.

Apanteles aff. acutissimus Gr. est un parasitoïde des chenilles de Diaphana indica (Saunders) sur Cucurbitaceae.

Apanteles sp. est un parasitoïde des chenilles de Phthorimea operculella (Zeller) sur Solanaceae. Meteorus sp. est un parasitoïde des chenilles de Vanessa cardui Linné sur Asteraceae.

• Les Encyrtidae

Les Encyrtidae du genre Copidosoma sont des parasitoïdes de chenilles de Gelechidae et de Noctuidae.

Copidosoma koelheri Bl. est un parasitoïde des chenilles de P. operculella sur Solanaceae, de Trichoplusia aurichalcea (Fab.) sur Solanaceae et d’Agrotis ipsilon (Hufn.) sur Solanaceae.

• Les Eulophidae

Les Eulophidae des genres Oomyzus et Euplectrus sont des parasitoïdes de chenilles d’Yponomeutidae et de Noctuidae.

Oomyzus sokolowskii Kurd. est un parasitoïde des chenilles de P. xylostella sur Brassicaceae qui n’était pas encore signalé de la Réunion.

Euplectrus sp. est un parasitoïde des chenilles d’Heliothis armigera (Hübn.) sur Solanaceae.

• Les Eupelmidae

Les Eupelmidae du genre Eupelmus sont des parasitoïdes des chenilles de Crambidae.

Eupelmus sp. est un parasitoïde des chenilles de Maruca vitrata (Fab.) sur Fabaceae.

• Les Pteromalidae

Les Pteromalidae du genre Pteromalus sont des parasitoïdes des chenilles de Crambidae.

Pteromalus sp. est un parasitoïde des chenilles de M. vitrata sur Fabaceae.
 
 

Diptera parasitoïdes des chenilles de Lepidoptera • Les Tachinidae

Les Tachinidae du genre Drino sont des parasitoïdes des chenilles de Crambidae.

Drino sp. est un parasitoïde des chenilles de D. indica sur Cucurbitaceae.
 
 

Hymenoptera parasitoïdes de larves et pupes de Tephritidae • Les Braconidae

Les Braconidae sont des parasitoïdes larvaires des Tephritidae-Dacini.

Psyttalia fletcheri (Silvestri) est un des parasitoïdes que l’on rencontre relativement fréquemment sur le littoral sud et ouest comme dans le cirque de Salazie: il vit principalement aux dépens de B. cucurbitae mais nous l’avons également obtenu des pupes de D. ciliatus. En 1995—96, le CIRAD a procédé à l’introduction et au lâcher de cette espèce en provenance d’Hawaï (Quilici et al., non publ.). Cette espèce a été introduite dans le cadre d’un programme de lutte biologique mené par le CIRAD-FLHOR (S. Quilici et B. Hurtrel, com. pers.).

• Les Eulophidae

Les Eulophidae sont des parasitoïdes larvaires de Dacini.

Tetrastichus giffardianus Silvestri se rencontre sur le littoral de St Pierre à Ste Marie mais également en altitude puisque nous l’avons élevé de B. cucurbitae dans le cirque de Salazie (850 m) et de D. demmerezi (650 m) à Montvert les Hauts. C’est un parasitoïde commun qui vit aux dépens des 3 espèces de Dacini et qui a été introduit et lâché massivement par Etienne entre 1972 et 1975 à la Réunion.

• Les Pteromalidae

Les Pteromalidae sont des parasitoïdes pupaux de Dacini mais aussi de Muscidae.
Spalangia seyrigi Risbec: ex pupes de D. ciliatus.

Spalangia gemina Boucek : ex pupes de B. cucurbitae et D. demmerezi.

Spalangia endius Walker: ex pupes de D. ciliatus.

Ploskana tenuis Boucek: ex pupes de B. cucurbitae.

• Les Chalcididae

Dirhinus giffardii Silvestri: ex pupe de D. ciliatus entre Piton Hyacinthe et le Tampon.
Un unique exemplaire déterminé (le Tampon) et un Dirhinus sp. (capturé à Bassin Plat).

• Les Diapriidae

Trichopria sp.: ex pupes de D. ciliatus à Bras Pontho.
Ces parasitoïdes polyphages ont été récoltés en nombre réduit et toujours à moyenne altitude.

 
 

Les principaux prédateurs

Prédateurs d’Aleyrodidae

• Les Miridae

Les Miridae sont des petits prédateurs hémiptères qui ont en général un régime mixte mais où prédomine suivant les espèces, soit l’alimentation animale ou l’alimentation végétale. C’est le cas de la douzaine d’espèces mentionnées au tableau 2. Ces espèces comprennent des insectes qui peuvent être en même temps phytophages et prédateurs puisque l’on a observé les adultes exercer une action prédatrice répétée sur des pullulations d’Aleyrodidae et d’Aphididae sur Solanaceae, Cucurbitaceae, Fabaceae et Asteraceae. Ces espèces appartiennent aux genres Dereaocoris, Nesidiocoris, Campylomma, Trigonotylus et Lygus.

• Les Anthocoridae

Les hémiptères Anthocoridae sont uniquement prédateurs et, sensibles à une longue photopériode, s’observent durant l’été austral sur les pullulations d’Aleyrodidae et d’Aphididae. Ce sont les espèces des genres Orius et Cardiastethus sur Solanaceae, Cucurbitaceae, Fabaceae et Asteraceae principalement.

• Les Hemerobiidae

Les hémiptères Hemerobiidae du genre Micromus ont des larves prédatrices très actives également sur les pullulations d’Aleyrodidae et d’Aphididae sur Solanaceae et Asteraceae principalement.

• Les Anystidae

Les acariens Anystidae, en l’occurrence Anystis baccarum (L.), ont été observés occasionnellement s’attaquant à des larves et adultes d’Aleyrodidae sur Solanaceae.

• Les Phytoseiidae

Les acariens Phytoseiidae, du genre Amblyseius, ont exercé une activité prédatrice ponctuelle sur des larves et des nymphes d’Aleyrodidae sur Cucurbitaceae.
 
 

Prédateurs d’Aphididae • Les Chrysopidae

Les Chrysopidae sont des neuroptères, avec les genres Mallada, Borniochrysa et Ceratochrysa, qui sont d’actifs prédateurs aphidiphages à l’état larvaire essentiellement sur Solanaceae et Cucurbitaceae.

• Les Syrphidae

Les diptères Syrphidae, avec les genres Paragus, Ischiodon, Allograpta et Epistrophe, exercent une action prédatrice importante, grâce à leurs larves apodes, sur tous les stades des Aphididae dès l’apparition de jeunes colonies sur Solanaceae, Cucurbitaceae, Fabaceae, Liliaceae et Asteraceae.

• Les Coccinellidae

Les coléoptères Coccinellidae sont des prédateurs polyphages d’Aphididae mais aussi d’Aleyrodidae, de Margarodidae et de Coccidae, surtout à l’état larvaire mais également au niveau des adultes.

Exochomus laeviusculus Weise est principalement un prédateur des genres Toxoptera et Neotoxoptera sur Solanaceae, Fabaceae et Liliaceae.

Scymnus constrictus Mulsant a été observé comme prédateur essentiellement d’A. gossypii sur Cucurbitaceae sur toutes les zones littorales et à moyenne altitude.

Platynaspis capicola Crotch a été également observé comme prédateur d’A. gossypii sur Cucurbitaceae mais sur quelques stations littorales seulement.

Cheilomenes sulphurea (Olivier) a été capturé en quelques exemplaires à 1100m d’altitude, à côté d’A. gossypi sur Cucurbitaceae.
 
 

Prédateurs de chenilles de Lepidoptera • Les Nabidae

Les hémiptères Nabidae sont des grands prédateurs mais difficilement utilisables dans le cadre de la lutte biologique suite à leur polyphagie.

Nabis capsiformis Germar est un prédateur polyphage de chenilles de Noctuidae, de Pentatomidae adultes et occasionnellement de Tephritidae adultes.

• Les Syrphidae

Les diptères Syrphidae avec les genres Melanostoma et Episyrphus qui, sont des prédateurs occasionnels à l’état larvaire de jeunes chenilles de P. xylostella.

• Les Formicidae

Les hyménoptères Formicidae, notamment avec Solenopsis geminata (Fab.), sont de redoutables prédateurs polyphages. Ils peuvent aussi jouer un rôle de ravageur lorsqu’ils installent et protègent de jeunes cochenilles et pucerons sur de nouvelles cultures.
 
 

Prédateurs de Tephritidae • Les Muscidae

Les Muscidae sont des diptères prédateurs de larves de Tephritidae.

Atherigona orientalis Schiner, est un ravageur secondaire qui peut accomplir son cycle préimaginal sur des légumes-fruits en cours de décomposition. Des expérimentations répétées en laboratoire ont montré que les larves de cette espèce exercent également une activité prédatrice sur les deux premiers stades larvaires des 5 espèces de Tephritidae inféodées aux cultures maraîchères dont les Solanaceae et les Cucurbitaceae.

• Les Formicidae

Les Formicidae, S. geminata principalement, ont souvent été observées en train d’extraire des larves de Dacini des légumes-fruits (des galeries larvaires) mais également de récupérer des larves de troisième stade ayant sauté du fruit, cherchant à s’enfouir dans le sol et à se nymphoser.
 
 

Prédateurs de Thripidae • Les Aeolothripidae

Les Aeolothripidae sont des prédateurs thysanoptères de Thripidae.

Franklinothrips vespiformis (Crawford) exerce une activité prédatrice sur Thrips palmi sur Cucurbitaceae, Fabaceae et sur Thrips tabaci sur Liliaceae sur certains sites inventoriés.

• Les Thripidae

Les Thripidae comportent eux mêmes des espèces prédatrices telles que:

Scolothrips rhagebianus Priesner et Scolothrips hartwigi Priesner qui ont des régimes alimentaires que nous n’avons pas pu observer bien que ces deux espèces soient considérées comme des espèces prédatrices (Quilici et al., 1997).

• Les Phlaeothripidae

Les Phlaeothripidae sont des prédateurs thysanoptères de Thripidae:
Haplothrips gowdeyi Fr. a été récolté à plusieurs reprises avec des F. occidentalis et T. palmi sur Solanaceae et Apiaceae.

• Les Phytoseiidae

Les Phytoseiidae sont généralement des acariens prédateurs de Tetranychidae mais également de Thripidae.
Amblyseius barkeri (Hugues) a été vu s’attaquant à de jeunes larves de Thrips palmi sur Cucurbitaceae.

• Les Anystidae

Les Anystidae sont des acariens relativement polyphages s’attaquant à de petits insectes (Aleyrodidae, Thripidae, Psyllidae) et à des acariens (Tetranychidae).

Anystis baccarum (L.) est une espèce rapide et opportuniste qui s’attaque à des Aleyrodidae sur Solanaceae et des Thripidae sur Cucurbitaceae.
 
 

Prédateurs de Coccoïdea

Les Coccinellidae, Syrphidae et Hemerobiidae dont nous avons déjà vu le rôle prédateur s’attaquent aussi aux insectes du groupe de Coccoïdea.

Prédateurs de Tetranychidae

• Les Cecidomyiidae

Certaines espèces de diptères Cecidomyiidae peuvent être aphidiphages ou acariphages.

Les larves de Feltiella acarisuga (Vallot) s’attaquent à des Tetranychidae comme Tetranychus rooyenae Meyer sur Cucurbitaceae.

• Les Phytoseiidae

Les Phytoseiidae sont des prédateurs d’acariens.

Phytoseiulus persimilis Ath. H. exerce une activité prédatrice intense sur les larves et adultes de Tetranychus urticae Koch, T. evansi Bak. et P., T. gardeniae Meyer sur Solanaceae et Cucurbitaceae.

Quant aux autres espèces de Phytoseiidae récoltées nous n’avons pas d’informations spécifiques sur les Tetranychidae attaqués.
 
 

Conclusion

Les organismes auxiliaires sont nombreux vis à vis des ravageurs et nous nous sommes cantonnés aux arthropodes, sachant que d’autres régulateurs des populations de ravageurs existent à savoir des vertébrés (oiseaux…), invertébrés (nématodes…), pathogènes divers (champignons, virus, bactéries…).

La présence des plantes adventices est très importante dans une perspective de lutte intégrée. Les adventices constituent en effet des refuges pour les ravageurs comme pour les auxiliaires, que ce soit en zone périphérique ou en zone intercalaire des cultures.

Il est intéressant de noter que certains ravageurs peuvent également se comporter en auxiliaires tels que les Miridae, certaines espèces de Muscidae et de Formicidae.

Cet inventaire n’est qu’une première approche en tout état de cause et constitue un outil de travail pour la mise en œuvre d’actions de lutte intégrée dans le cadre des cultures maraîchères.

Remerciements­Nous tenons à remercier d’abord l’ensemble des agriculteurs réunionnais qui ont fait preuve de disponibilité et d’enthousiasme dans le cadre de cet inventaire comme les agents des services du développement (SPV, ARMEFLHOR, FDGDEC) pour leur contribution.

De même nous remercions vivement les différents spécialistes ayant participé aux déterminations des arthropodes à savoir M. Biondi (altises), Coppito (Italie); J. Bonfils (cicadelles), Mazamet (France); J. P. Bournier (thrips) Montpellier, (France); J. Chassain (élatérides), Thomery (France); C. Duverger (coccinelles), Bordeaux (France), C. Guillermet (lépidoptères), le Port­la Réunion (France); K. Harris (cécidomyies), Surey (Grande Bretagne); C. Kassebeer (syrphes), Kiel (Allemagne); F. Leclant (pucerons), Montpellier (France); J. C. Ledoux (araignées), Aramon (France); D. Matile-Ferrero (cochenilles), Paris (France); P. Ohm (hémérobes et chrysopes), Kiel (Allemagne); M. Martinez (agromyzides) , (France); J. Sudre (cérambycides), Vulbens (France); E. A. Ueckermann (acariens) Pretoria (Afrique du Sud).

Bibliographie

  • Blancart D., Lecoq H. et Pitrat M. (1991) Maladies des Cucurbitacées: observer, identifier, lutter. Ed. INRA; Paris, 301 pp.
  • Boissot N., Reynaud B. and Letourmy P. (1998) Temporal analysis of western flower thrips (Thysanoptera: Thripidae) population dynamics on Reunion island. Environ. Entomol. 27, 1437—1443.
  • Bonfils J., Quilici S. et Reynaud B. (1994) Les Hémiptères Auchénorhynques de l’île de la Réunion. Bull. Soc. Ent. Fr. 99, 227—240.
  • Bordat D. (1990) Rapport de mission à l’île de la Réunion. IRAT du 2 au 23 novembre 1989. Janvier 1990. 8 p. et 3 p. d’annexes.
  • Bouriquet G. (1938) Note concernant les maladies des plantes cultivées à la Réunion. Rev. Agric. Réunion 43, 33—38.
  • Bournier J. P. (2000) Les Thysanoptères de l’île de la Réunion: les Terebrantia. Bull. Soc. Ent. Fr. 105, 65—108.
  • Brevault T. (1999) Mécanismes de localisation de l’hôte chez la mouche de la tomate, Neoceratitis cyanescens (Bezzi) (Diptera: Tephritidae). Thèse de Doctorat, ENSA Montpellier, 139 pp.
  • Chazeau J., Etienne J. et Fursch H. (1974) Les Coccinellidae de l’île de la Réunion (Insecta Coleoptera). Bull. Mus. Nat. Hist. Nat. 3e série, zoologie 140, 265—297.
  • Cocquerel C. (1859) Notes sur quelques insectes de Madagascar et de Bourbon. Ann. Soc. Entomol. Fr. 7, 239—260.
  • De Bon H., Boissot N., Girard J. C., Michellon R., Reynaud B. et Vercambre B. (1992) Le point sur les recherches concernant les cultures maraîchères à la Réunion. Rev. Agric. Sucr. Ile Maurice 71, 148—157.
  • Denholm I. and Rowland M.W. (1992) Tactics for managing pesticide resistance in arthropods: theory and practice. Annu. Rev. Entomol. 37, 91—112.
  • Etienne J. (1972) Les principales Trypétides nuisibles de l’île de la Réunion. Ann. Soc. Ent. Fr. (N.S.) 8, 485—491.
  • Ferragu M. et Richard R. (1992) Etude portant sur des Cratopus de l’île de la Réunion (Coleoptera Cucurlionidae). Rev. Fr. Entomol. (N.S.) 14, 111—116.
  • Gutierrez J. et Etienne J. (1986) Les Tetranychidae de l’île de la Réunion et quelques uns de leurs prédateurs. Agron. Trop. 41, 84—91.
  • Mamet R. (1954) The ants (Hymenoptera Formicidae) of the Mascarene Islands. The Mauritius Institute Bulletin. vol. III; part 4, 249—259.
  • Parella M. P. (1987) Biology of Liriomyza. Annu. Rev. Entomol. 32, 201—224.
  • Peterschmitt M., Granier M., Mekdoud R., Dalmon A., Gambin O., Vayssieres J. F. and Reynaud B. (1999) First report of Tomato Yellow Leaf Curl Virus in Reunion Island. Plant disease. March 1999. p. 303.
  • Plénet A. (1965) Parasites animaux des principales plantes cultivées à la Réunion, pp. 203—216. In Congrès de la Protection des Cultures Tropicales; Comptes Rendus des travaux; Chambre de Comm. et d’Ind. Marseille; 23—27 mars 1965.
  • Pointel J. G. (1964) Lutte contre les mouches des fruits, Rapport annuel IRAT-Réunion, 76.
  • Quilici S., Leclant F., Delvare G. et Vercambre B. (1988) Aphids and their natural enemies of Reunion Island: a review and new observations, pp. 111—117. In Ecology and Effectiveness of Aphidophaga (Edited by Niemczyck E. et Dixon A.F.G.). Proc. Int. Symp., Teresin (Poland), SPB Acad. Publishing bv, The Hague, The Netherlands, 341 pp.
  • Quilici S. et Langlois A. (1992) Bioecological survey of weevils damaging fruit crops in Reunion Island. Proc. Int. Soc. Citriculture 3, 1229—1232.
  • Quilici S., Kreiter S., Ueckermann E. A. et Vincenot D. (1997) Predatory mites (acari) from various crops on Reunion Island. Int. J. Acarol. 23, 283—291.
  • Quilici S., Reynaud B. et Bonfils J. (1998) Sur deux espèces d’Hémiptères Auchénorhynques nouvelles pour la Réunion et d’importance économique potentielle. Bull. Entomol. Fr. 103, 369—372.
  • Remaudière G. et Etienne J. (1988) Les Aphididae (Hom.) des îles et archipels de l’Océan Indien. Agron. Trop. 43, 327—346.
  • Russell L. M. and Etienne J. (1985) A list of the Aleyrodidae of the Island of Reunion. Proc. Entomol. Soc. Wash. 87, 202—206.
  • Séméria Y. et Quilici S. (1986) Première contribution à l’étude des Chrysopidae (Neuroptera: Plannipennia) de l’île de la Réunion (Océan Indien). Neuroptera International IV, 107—115.
  • Signoret V. (1860) Faune des Hémiptères de Madagascar. Première partie: Homoptères. Ann. Soc. Entomol. Fr. 8, 178.
  • Tabashnik B. E. (1994) Evolution of resistance to Bacillus thuringiensis. Annu. Rev. Entomol. 39, 47—79.
  • Vayssières J. F. (1999) Les relations insectes-plantes chez les Dacini (Diptera: Tephritidae) ravageurs des Cucurbitaceae à la Réunion. Thèse de Doctorat du M.N.H.N. / Paris; 205 p. et 36 p. d’annexes.
  • Vercambre B. (1980) Etudes réalisées à la Réunion sur la mouche maraîchère: Liriomyza trifolii Burgess. Rev. Agric. Sucr. Ile Maurice 59, 147—157.
  • Vercambre B. (1989) Etudes sur les insectes des cultures maraîchères, pp. 149—152. In Rapport Annuel 1988 IRAT Réunion. Cinq années de recherches agronomiques 1984—1988. CIRAD; Station de la Bretagne. St Denis; la Réunion.
  • Weintraub P. G. and Horowitz A. R. (1995) The newest leafminer pest in Israel, Liriomyza huidobrensis. Phytoparasitica 23, 177—184.

Copyright 2001 The International Journal of Tropical Insect Science


The following images related to this document are available:

Photo images

[ti01002t1.jpg] [ti01002t2.jpg]
Home Faq Resources Email Bioline
© Bioline International, 1989 - 2024, Site last up-dated on 01-Sep-2022.
Site created and maintained by the Reference Center on Environmental Information, CRIA, Brazil
System hosted by the Google Cloud Platform, GCP, Brazil